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Técnico en Inmunología

El precio original era: 1.500,00 €.El precio actual es: 600,00 €.

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Descripción

En el ámbito de la sanidad, los técnicos en inmunología son de primordial importancia ya que conocen todo lo relacionado con los procedimientos que se llevan a cabo en un laboratorio clínico. Así, con el presente curso se pretende analizar las técnicas inmunológicas y bioquímicas de análisis y de separación, incluyendo las técnicas de identificación genética, empleadas en los laboratorios de Análisis Clínicos.

Detalles del producto

Modalidad
El curso se imparte completamente en modalidad online, por lo que el alumno no necesita ningún material físico para comenzar su formación.

Duración
La duración estimada del curso es de 300 horas. Una vez matriculado, el alumno dispondrá de un plazo máximo de 24 meses para completar la formación, siendo el tiempo medio de finalización de aproximadamente 3 meses en la mayoría de los casos.

Prácticas

Tienes la posibilidad de realizar prácticas profesionales para complementar tu formación. Consulta las condiciones disponibles.

Curso baremable
Sí.

Bolsa de trabajo
Todos los alumnos que finalicen satisfactoriamente el curso tendrán la posibilidad de acceder a nuestra bolsa de trabajo.

TEMARIO

UNIDAD DIDÁCTICA 1. ORGANIZACIÓN Y GESTIÓN DE UN LABORATORIO

  1. Documentación sanitaria.
  2. – Documentación clínica.
  3. – Documentación no clínica.
  4. Organización jerárquica y departamental de un centro sanitario.
  5. – Organigramas de centros sanitarios.
  6. – Organigrama de un laboratorio.
  7. – Funciones del personal de un laboratorio.
  8. Normas de seguridad en el trabajo referidas a los aparatos y las instalaciones de los laboratorios clínicos para la prevención de riesgos físicos y químicos.
  9. Gestión de existencias.
  10. – Sistemas de almacenamiento.
  11. – Métodos de valoración de existencias.
  12. – Normas de seguridad e higiene en los almacenes de centros sanitarios.
  13. Conservación de equipos.
  14. – Tipos de equipos de un laboratorio clínico.
  15. – Mantenimiento periódico de los equipos de laboratorio.
  16. – Medidas a tomar en caso de fallo de los equipos.
  17. Aplicaciones informáticas.
  18. – Conocimientos básicos de informática.
  19. – Tipos y estructura de las bases de datos.
  20. – Aplicaciones informáticas de gestión y control de almacén.
  21. Estadística básica.
  22. – Medidas de tendencia central.
  23. – Medidas de dispersión.
  24. – Representaciones gráficas de resultados.
  25. Información científico_técnica.
  26. – Estructura de presentación de la información científica.
  27. – Búsqueda de información en bases de datos sanitarias.

UNIDAD DIDÁCTICA 2. TÉCNICAS DE PROCESAMIENTO DE MUESTRAS BIOLÓGICAS

  1. Muestras biológicas humanas:
  2. – Concepto de espécimen y de muestra.
  3. – Características generales de la sangre.
  4. * Diferencia entre sangre venosa y sangre capilar.
  5. * Uso de sangre en ayunas.
  6. * Utilización de suero o plasma.
  7. * Hemólisis, lipemia o ictericia como fuentes de error.
  8. * Anticoagulantes.
  9. – Características generales de la orina.
  10. * Sustancias y elementos, formas analizables en muestras de orina.
  11. – Características generales de las heces.
  12. – Muestras seminales; LCR, líquidos serosos, exudados vaginales, exudados uretrales, exudados óticos, exudados conjuntivales y exudados nasofaríngeos; esputo y hemocultivos.
  13. Obtención de muestras biológicas.
  14. – Obtención de plasma y suero.
  15. – Recogida de orina.
  16. – Recogida de heces.
  17. Manipulación de las muestras biológicas.
  18. – Sistemas de transporte de las muestras.
  19. – Sistemas de recepción, identificación y distribución de las muestras.
  20. – Centrifugación de las muestras: fundamento de las técnicas de centrifugación.
  21. – Conservación de las muestras biológicas.
  22. – Normas de seguridad e higiene para la prevención de riesgos biológicos.
  23. Cálculos en la realización de diluciones.
  24. Normas de seguridad e higiene en la manipulación de muestras biológicas.

UNIDAD DIDÁCTICA 3. TÉCNICAS INMUNOLÓGICAS

  1. Fisiología de la respuesta inmune.
  2. – Inmunidad celular.
  3. – Concepto de antígeno y formación de anticuerpos.
  4. – Reacción antígeno_anticuerpo.
  5. – Sistema de complemento.
  6. – Antígenos de histocompatibilidad.
  7. – Mecanismos de la respuesta inmune.
  8. – Autoinmunidad, inmunodeficiencia e hipersensibilidad.
  9. Técnicas de análisis basadas en la precipitación y aglutinación de complejos antígeno_anticuerpo.
  10. – Precipitación en medio líquido.
  11. – Técnicas de precipitación en gel.
  12. – Técnicas de aglutinación con hematíes y látex.
  13. – Técnicas de inhibición de la aglutinación.
  14. – Fijación del complemento.
  15. Inmunoensayos.
  16. – Radioinmunoensayos.
  17. – Enzimainmunoensayos.
  18. – Fluoroinmunoensayos.
  19. – Ensayos con marcadores quimioluminiscentes y bioluminiscentes.
  20. Inmunofluorescencia.
  21. – Microscopio de fluorescencia.
  22. – Fluoróforos.
  23. – Inmunofluorescencia directa.
  24. – Inmunofluorescencia indirecta.
  25. Control de calidad de las técnicas inmunológicas.
  26. – Controles internos y controles externos.
  27. – Programas de control de calidad.
  28. – Coeficientes de variación.
  29. – Gráficos de control de calidad.

UNIDAD DIDÁCTICA 4. TÉCNICAS DE DETERMINACIÓN DE METABOLITOS EN QUÍMICA CLÍNICA

  1. Estructura, función y metabolismo de las sustancias analizables en el laboratorio de Química Clínica.
  2. – Estructura química y conceptos metabólicos básicos sobre glúcidos, lípidos y proteínas.
  3. – Enzimología clínica.
  4. – Fisiología del equilibrio hidroelectrolítico y ácido_base del organismo.
  5. Espectrofotometría de absorción y dispersión.
  6. – Interacción de la radiación y la materia: absorción y dispersión de luz.
  7. – Ley de Lambert_Beer.
  8. – Transmitancia y absorbancia.
  9. – Componentes de un fotómetro y de un espectrofotómetro.
  10. – Cálculo de las concentraciones mediante el uso de patrones y curvas de calibrado.
  11. – Tipos de autoanalizadores utilizados en Bioquímica.
  12. – Nefelometría y turbidimetría.
  13. Espectrofotometría de emisión y absorción atómica.
  14. – Fundamentos físicos de la fotometría de llama.
  15. – Componentes de un fotómetro de llama.
  16. – Fundamentos físicos de la espectrofotometría de absorción atómica.
  17. – Componentes de un espectrofotómetro de absorción atómica.
  18. – Uso de patrones en la espectrofotometría de absorción atómica.
  19. Técnicas basadas en la detección de potenciales eléctricos.
  20. – Ecuación de Nernst.
  21. – Ecuación de Henderson_Hasselbach.
  22. – Determinación de concentraciones mediante electrodos.
  23. – Tipos de electrodos.
  24. Control de calidad en Química Clínica.
  25. – Controles internos y controles externos.
  26. – Programas de control de calidad.
  27. – Coeficientes de variación.
  28. – Gráficos de control de calidad.

UNIDAD DIDÁCTICA 5. TÉCNICAS DE SEPARACIÓN EN BIOQUÍMICA

  1. Electroforesis.
  2. – Fundamento teórico de la separación electroforética.
  3. – Componentes de un equipo de electroforesis.
  4. – Tipos de soporte.
  5. – Preparación de los soportes.
  6. – Aplicación de la muestra.
  7. – Revelado de las placas de electroforesis.
  8. – Densitometría.
  9. Técnicas electroforéticas especiales.
  10. – Isoelectroenfoque.
  11. – Electroforesis en SDS.
  12. – Inmunoelectroforesis.
  13. – Electroinmunodifusión.
  14. Cromatografía.
  15. – Fundamento teórico de las separaciones cromatográficas.
  16. – Clasificación de las técnicas cromatográficas.
  17. – Cromatografía en papel, cromatografía en capa fina y cromatografía en columna.
  18. – Definición y cálculo de los parámetros utilizados en las separaciones cromatográficas.
  19. – Mecanismos de separación.
  20. – Cromatógrafos empleados en HPLC y cromatografía de gases.
  21. Determinación de fármacos y drogas de abuso.
  22. – Tipos/clasificación de fármacos y drogas de abuso.
  23. – Monitorización de fármacos terapéuticos.
  24. – Detección de drogas de abuso.
  25. Control de calidad de las técnicas electroforéticas y cromatográficas.
  26. – Controles internos y controles externos.
  27. – Programas de control de calidad.
  28. – Coeficientes de variación.
  29. – Gráficos de control de calidad.

UNIDAD DIDÁCTICA 6. TÉCNICAS DE ANÁLISIS MOLECULAR

  1. Estructura y función de los ácidos nucleicos.
  2. – Estructura del núcleo, la cromatina y los cromosomas.
  3. – El ácido desoxirribonucleico como material genético.
  4. – Desnaturalización del ADN.
  5. – Replicación, transcripción y traducción de la información genética.
  6. – Principios básicos de la regulación genética.
  7. – Alteraciones en el ADN: mutaciones.
  8. Objetivos y técnicas de los estudios cromosómicos.
  9. – Cultivos de linfocitos y de fibroblastos.
  10. – Preparación de las muestras.
  11. – Microfotografías e identificación de los cromosomas.
  12. Técnicas básicas en el diagnóstico molecular.
  13. – Electroforesis de ácidos nucleicos.
  14. – Sondas genéticas. Técnicas de marcado de sondas.
  15. – Técnicas de transferencia e hibridación de ácidos nucleicos y proteínas: Southern, Northern y Western “blotting”, “Dot Blot” e Hibridación “in situ”.
  16. – Enzimas de restricción y técnicas de ruptura inespecífica de ADN.
  17. – Tecnología del ADN recombinante.
  18. – ADNc.
  19. – Amplificación mediante la reacción en cadena de la polimerasa (PCR).
  20. – Análisis de secuencias de ADN.
  21. – Transferencia de ADN a células eucariotas.
  22. Aplicación de la genética molecular a:
  23. – Aplicación de la genética molecular al diagnóstico de enfermedades hereditarias.
  24. * Análisis molecular directo e indirecto.
  25. * Ejemplos de patologías estudiadas mediante técnicas de genética molecular.
  26. – Aplicación de la genética molecular al estudio de enfermedades genéticas adquiridas (cáncer).
  27. * Funciones de los oncogenes y factores de crecimiento.
  28. * Genes de familia ras.
  29. – Aplicación de la genética molecular al estudio de las patologías infecciosas.
  30. – Aplicaciones de la genética molecular en medicina legal y forense.

ACREDITACIONES Y TITULACIÓN -- Posibilidad de solicitar el Certificado Universitario Internacional

Somos un centro que cuenta con la autorización de la Universidad CLEA para la impartición de formación permanente o formación de extensión universitaria dependiente de su departamento de posgrado. Disponemos de formaciones con diploma universitario de expedición conjunta de la Universidad CLEA con Doctrina Qualitas y el Círculo de Universidades Hispanoamericanas Universidad Alfonso III el Magno (UAIII).

El diploma incluye un número de referencia que, directamente, pasa a registrarte en la base de datos de La Agencia Universitaria DQ, en la de la Universidad CLEA que recoge esta titulación en su departamento de posgrado y en el registro del Círculo de Universidades Hispanoamericanas UAIII. En el momento en que lo desees, puedes ponerte en contacto con su equipo y solicitar cualquiera de las herramientas que ponen a tu disposición.

Todas las formaciones certificadas por DQ pasan a ser dependientes del área de posgrado de la Universidad CLEA. Por esta razón, se expide este diploma, como el título universitario de formación permanente o formación de extensión universitaria con mayor relevancia internacional. Un título de expedición conjunta entre la Universidad CLEA, DQ y el Círculo de Universidades Hispanoamericanas UAIII.

El Diploma Universitario DQ-CLEA-UAIII, dispone de los créditos académicos que corresponden a la duración cursada. Dispone también del programa cursado en su reverso y viene firmado por el rector de la universidad del que es dependiente, así como del director académico de DQ, que certifica su equivalencia a créditos ECTS.

También participa en este diploma universitario el Círculo de Universidades Hispanoamericanas UAIII. Una institución académica que dispone de presencia en más de 10 países latinoamericanos y que trabaja con más de 20 universidades recomendadas. Nuestra asociación estratégica con esta institución es toda una garantía de posibilidades para nuestros alumnos titulados.

Máster Título Propio de Formación Permanente con una carga de al menos 1500 horas (100 créditos académicos equivalentes a 60 ECTS)

Diploma de Especialista Universitario con una carga de al menos 750 horas (50 créditos académicos equivalentes a 30ECTS).

Diploma de Experto Universitario con una carga de al menos 250 horas (17 créditos académicos equivalentes a 10ECTS) horas hasta 750 horas.

Estos tres niveles corresponden a niveles 6 o 7 CIN E (Clasificación Internacional Normalizada de la Educación) de la UNESCO.

Diploma de Curso Universitario con una carga de hasta 250 (17 créditos académicos equivalentes a 10ECTS) horas.

ACREDITACIONES Y TITULACIÓN
Enseñanza no oficial y no conducente a la obtención de un título con carácter oficial o certificado de profesionalidad.

No obstante, mediante pruebas libres convocadas por las Comunidades Autónomas o por el Servicio Público de Empleo Estatal se puede obtener la titulación oficial.

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